NADP-dependentní dekarboxylace malátdehydrogenáza

enzym NADP-malik
Identifikátory
Kód KF 1.1.1.40
Číslo CAS 9028-47-1
Enzymové databáze
IntEnz pohled IntEnz
BRENDA Vstup BRENDA
ExPASy NiceZyme pohled
MetaCyc metabolická dráha
KEGG Vstup do KEGG
PRIAM profil
Struktury PNR RCSB PDB PDBe PDBj PDBsoučet
Genová ontologie AmiGO  • EGO
Vyhledávání
PMC články
PubMed články
NCBI NCBI proteiny
CAS 9028-47-1

NADP-dependentní dekarboxylace malátdehydrogenáza nebo NADP-jablečný enzym ( NADP-ME ) je enzym , který katalyzuje  chemickou reakci v přítomnosti iontů dvojmocných kovů:

(S)-malát + NADP + -> pyruvát + CO 2 + NADPH

Enzym využívá (S)-malát a NADP + jako substrát , reakcí vzniká  pyruvát , oxid uhličitý  a NADPH . Během reakce se malát oxiduje  na pyruvát a CO 2 a NADP +  se redukuje na NADPH.

Enzym patří do rodiny oxidoreduktáz nebo spíše k enzymům, které interagují se skupinou CH-OH donoru a používají NAD + nebo NADP + jako akceptor . Systematický název  tohoto enzymu je:  (S)-malát: NADP +  oxidoreduktáza (oxalacetát dekarboxyláza) . Malátdehydrogenáza se účastní metabolismu pyruvátu a sekvestrace uhlíku . Enzym NADP-malik je jedním ze tří dekarboxylačních enzymů podílejících se na koncentraci anorganického uhlíku v  rostlinách C4 a CAM . Do této třídy také patří  NAD-malik-enzym  a PEP-karboxykináza . [1]  Přestože často převažuje jedna ze tří fotosyntetických dekarboxyláz, může dojít i k současné aktivaci aktivity všech tří enzymů [3] .

Struktura enzymu

Na základě krystalografických dat homologního  savčího jablečného enzymu závislého na NADP byl vyvinut 3D model NADP-ME zapojený do dráhy C4 v rostlinách k identifikaci hlavních zbytků odpovědných za vazbu substrátu během katalýzy. Vazebné místo NADP +  zahrnuje dva  motivy bohaté na glycin  , GXGXXG, hydrofobní drážku s alespoň šesti aminokyselinovými zbytky a záporně nabitý zbytek na konci ß řetězce. [4] [5]  Primární sekvence  prvního motivu, 240 GLGDLG 245 , je konsenzuální marker pro vazbu fosfátů, což naznačuje zapojení NADP + do vazby, další motivy bohaté na glycin přebírají klasický Rossmannův záhyb  — také typický marker pro  Vazba kofaktoru NADP . [6] 

 NADP-ME deficitní rostliny kukuřice získané umělou mutagenezí potvrzují navržený molekulárně biologický model. Nahrazení valinu glycinem kdekoli v motivu vede k úplné inaktivaci enzymu. Zároveň spektrální analýza nevykazuje významné rozdíly od formy divokého typu. Data naznačují poruchy v hlavním zbytku podílejícím se na vazbě a katalýze, a nikoli v interdoménovém zbytku ovlivňující konformační stabilitu. Důležitou roli hraje  argininový zbytek  na pozici 237, interagující s malátem  a NADP + , podílí se na vzniku elektrostatické interakce s negativně nabitou karboxylovou skupinou kyseliny a fosfátovou skupinou nukleotidu. Není známo, zda tento zbytek hraje důležitou roli ve vazebných interakcích substrátu nebo určuje polohu substrátu během katalýzy. [7]  Předpokládá se, že lysinový zbytek  na pozici 255 působí jako katalytická báze . K přesnému stanovení jeho biochemické role jsou však zapotřebí další studie.

Biologická funkce

Pokud vezmeme v úvahu tuto třídu enzymů obecně, pak se enzymy malik nacházejí v mnoha  eukaryotických organismech (od hub po savce). Je ukázána lokalizace enzymů na subcelulární úrovni. Enzym Malik je přítomen v cytosolu , mitochondriích  a chloroplastech . Zejména v rostlinách C4 je NADP-ME lokalizován v chloroplastech buněk, které pokrývají  vodivý svazek .

Během C 4 fotosyntézy  - biochemická dráha, která vznikla za účelem koncentrace CO 2 v místě jeho fixace RuBisCO  -  oxid uhličitý  vstupuje do  mezofylových buněk  a tvoří  oxaloacetát . Poté se oxaloacetát redukuje na malát. Malát je transportován do výstelkových buněk, kde podléhá dekarboxylaci za účasti NADP-ME. Protože malát vstupuje do jedné buňky pochvy z několika buněk mezofylu, výsledkem je koncentrace oxidu uhličitého v místě jeho fixace RuBisCo . [osm] 

Roli NADP-ME v koncentraci oxidu uhličitého potvrzuje studie provedená na transgenních rostlinách. Transgenní rostliny s částečnou ztrátou funkce NADP-ME (40 % aktivity NADP-ME divokého typu) vykazovaly významný pokles fixace CO 2 i při vysokých hladinách mezibuněčného oxidu uhličitého. To ukazuje na důležitost NADP-ME v regulaci toku uhlíku směrem  ke Calvinově cyklu .

Regulace enzymové aktivity

Ukázalo se, že exprese NADP-ME je regulována abiotickými stresovými faktory . Rostliny CAM v podmínkách sucha se  vyznačují uzavřením průduchů, aby se zabránilo ztrátě vody odpařováním , což vede k hladovění CO 2 . Tento proces je kompenzován skutečností, že uzavření průduchů aktivuje translaci NADP-ME, která zase během krátkých období absorpce CO2 zvyšuje účinnost absorpce CO2 a umožňuje tak  fixaci uhlíku .

Kromě dlouhodobé regulace enzymu prostřednictvím změn v genové expresi existuje krátkodobá regulace, která může být  zprostředkována alosterickými  mechanismy. Ukázalo se, že pro částečnou inhibici C4 NADP-ME  substrátu musí malát pravděpodobně mít dvě nezávislá vazebná místa: jedno v aktivním místě a druhé je alosterické. Inhibiční účinek je však závislý  na pH a objevuje se pouze při pH = 7, ale ne 8. Pozorování změny enzymové  aktivity  v závislosti na změně pH je v souladu s hypotézou, že NADP-ME je aktivní během  fotosyntézy : světelné reakce vedou ke zvýšení bazicity ve stromatu  chloroplastu  - lokalizace NADP-ME, což vede ke snížení inhibičního účinku malátu na NADP-ME, čímž přispívá ke zvýšení reaktivity enzymu. Naopak zpomalení světelných reakcí vede ke zvýšení kyselosti  média ve stromatu, což způsobuje inhibici NADP-ME malátem. Potřeba regulačního mechanismu se vysvětluje skutečností, že reakce  Calvinova cyklu  vyžadují vysokoenergetické produkty světelné fáze NADPH a ATP , a proto proces akumulace CO2  bez těchto produktů není užitečný.

Pro tento protein lze použít morfinový  model alosterické regulace .

Evoluce

Enzym NADP-malik, stejně jako všechny ostatní C4  dekarboxylázy, nebyl vyvinut de novo  , aby napomáhal fixaci CO2 pomocí RuBisCo  . Je nejpravděpodobnější, že NADP-ME byl transformován z C3 druhů během fotosyntézy , ale je také možný dřívější původ ze starověkého cytosolického  předka . V cytosolu enzym existoval jako série   "domácích"  izoforem navržených k provádění různých funkcí, včetně udržování hladin malátu během hypoxie , odstraňování  mikrospor  a ochrany proti patogenům . Pokud jde o mechanismus evoluce, má se za to, že funkčnost C4 byla způsobena chybou v oblastech promotoru při duplikaci genu, což vedlo k jeho  nadměrné expresi  v kódující oblasti v buňkách pochvy, což vede k  neofunkcionalizaci . Volba ve prospěch zachování funkce fixace CO 2 a také zvýšeného využití vody a dusíku ve stresových podmínkách byla způsobena evolučním tlakem.

Bylo zjištěno, že v průběhu evoluce enzym získal několik klíčových funkčních vlastností, zejména: zvýšenou katalytickou aktivitu, tetramerní strukturu a schopnost inhibice v závislosti na pH vlastním substrátem, malátem [9] . Místně řízená mutageneze spolu s rozlišením krystalové struktury C4 - NADP -ME z čiroku a kukuřice umožnila identifikaci řady aminokyselinových zbytků, které poskytují tyto funkce:

Poznámky

  1. Kanai, Ryuzi; Edwards, Gerald E. The Biochemistry of C 4 Photosynthesis // C 4 Plant Biology  (neopr.) / Rowan F. Sage, Russell K. Monson. - Academic Press , 1999. - S. 49-87. - ISBN 978-0-08-052839-7 .
  2. Furumoto T., Hata S., Izui K. Klonování cDNA a charakterizace kukuřičné fosfoenolpyruvátkarboxykinázy, specifického enzymu pro buňku bundle sheath  //  Plant Molecular Biology : journal. - 1999. - říjen ( roč. 41 , č. 3 ). - S. 301-311 . - doi : 10.1023/A:1006317120460 . — PMID 10598098 .
  3. Rossman, Michael G.; Liljas, Anders; Branden, Carl-Ivar; Banaszak, Leonard J. Evoluční a strukturální vztahy mezi dehydrogenázami // Enzymy  (neopr.) / Boyer, Paul D.. - 1975. - T. 11. - S. 61-102. - ISBN 978-0-12-122711-1 . - doi : 10.1016/S1874-6047(08)60210-3 .
  4. Bellamacina CR Motiv vázající nikotinamid dinukleotid: srovnání proteinů vázající nukleotidy  //  The FASEB Journal : deník. — Federace amerických společností pro experimentální biologii, 1996. - září ( roč. 10 , č. 11 ). - S. 1257-1269 . — PMID 8836039 .
  5. Rothermel BA, Nelson T. Primární struktura kukuřičného jablečného enzymu závislého na NADP  // The  Journal of Biological Chemistry  : journal. - 1989. - Listopad ( roč. 264 , č. 33 ). - S. 19587-19592 . — PMID 2584183 .
  6. Coleman, David E.; Rao, G. S. Jagannatha; Zlatník, EJ; Cook, Paul F.; Harris, Ben G. Krystalová struktura jablečného enzymu z Ascaris suum v komplexu s nikotinamid adenin dinukleotidem při rozlišení 2,3 Å  //  Biochemistry: journal. - 2002. - Červen ( roč. 41 , č. 22 ). - S. 6928-6938 . - doi : 10.1021/bi0255120 . — PMID 12033925 .
  7. Edwards GE, Franceschi VR, Voznesenskaya EV Jednobuněčná C(4) fotosyntéza versus dvoubuněčné (Kranzovo) paradigma  //  Annual Review of Plant Biology  : journal. - 2004. - Sv. 55 . - S. 173-196 . - doi : 10.1146/annurev.arplant.55.031903.141725 . — PMID 15377218 .
  8. ↑ 1 2 Veronica G. Maurino, Martin J. Lercher, Maria F. Drincovich, Luitgard Nagel-Steger, Alejandro Buschiazzo. Molekulární adaptace NADP-jablečného enzymu pro jeho funkci ve fotosyntéze C4 v trávách  (anglicky)  // Nature Plants. — 24. 6. 2019. — P. 1 . — ISSN 2055-0278 . - doi : 10.1038/s41477-019-0451-7 . Archivováno z originálu 20. června 2022.