Dráha šikimátu je metabolická dráha, jejímž meziproduktem je kyselina šikimová ( šikimát). Šikimátová dráha je známá jako specializovaná dráha pro biosyntézu benzoových aromatických sloučenin (velmi často v této funkci, spolu s šikimátovou dráhou, je také zaznamenán polyketidový (acetát-malonátový) mechanismus pro konstrukci benzenových jader - uzávěr (zip- sestavení) aromatických systémů prostřednictvím intramolekulární kondenzace jako kroton ). Takové dobře známé sloučeniny jako fenylalanin , tyrosin , tryptofan se v přírodě syntetizují šikimátovou cestou.benzoát , salicylát . Šikimátová dráha je zdrojem aromatických prekurzorů terpenoidních chinonů ( ubichinony , plastochinony , menachinony , fylochinony ), tokoferolů , folátu , flavonoidů , ligninů , suberinů , melaninů , taninů a dalších sloučenin, které v přírodě hrají různé role. Dráha šikimátu je jednou z nejstarších evolučně konzervovaných metabolických drah; jako zdroj základních složek (především tří proteinogenních aminokyselin) živé hmoty je ve skutečnosti součástí primárního metabolismu. Význam šikimátové dráhy je velký, protože tato dráha je jedinou zavedenou cestou pro biosyntézu řady nejdůležitějších přírodních sloučenin, včetně těch významných z hlediska jejich praktického využití. Šikimátovou dráhu je třeba v přísném smyslu chápat pouze jako obecnou část rozvětveného metabolického procesu – cestu pro biosyntézu kyseliny chorismové (chorismátu).
V roce 1935 německý organický chemik Hermann Otto Laurenz Fischer [článek] (1888-1960) a Gerda Dangshat (?-1964) poznamenali, že jimi strukturně charakterizované kyseliny chinová a šikimová mohou být biogeneticky (metabolicky) úzce příbuzné s benzoidovými aromatickými sloučeninami. zejména s kyselinou galovou [1] . [2] U kyseliny chinové byla známá biologická aromatizace (za účasti mikroorganismů byla pozorována tvorba některých fenolických sloučenin z kyseliny chininové a také se ukázalo, že kyselina chinová se v těle savců metabolizuje na kyselinu hippurovou ). Jasný důkaz, že hydroaromatické kyseliny jsou přírodními prekurzory přírodních aromatických sloučenin, však neexistoval až do 50. let 20. století [3] .
V roce 1950 získal americký mikrobiolog Bernard Davis (1916-1994) ultrafialovým zářením svou původní metodou selekce penicilinu řadu mutantů Escherichia coli schopných růst pouze v takovém živném médiu , do kterého byly přidány aromatické sloučeniny. Mnoho mutantů vyžadovalo fenylalanin , tyrosin , tryptofan , para - aminobenzoát a para - hydroxybenzoát (ve stopových množstvích). Překvapivě se ukázalo, že potřeba všech pěti sloučenin může být uspokojena přidáním kyseliny šikimové (shikimát), v té době považované za vzácnou sloučeninu vyskytující se pouze v některých rostlinách. Další skupina mutantů získaných Davisem nereagovala na přidaný šikimát jako náhradu za aromatický růstový faktor a bylo zjištěno, že některé z těchto mutantů samy akumulovaly kyselinu šikimovou v kultivačním médiu. Mutanti různých skupin by mohli růst syntrofně na minimálním živném médiu [3] . [čtyři]
Ukázalo se tedy, že šikimát, který v žádném případě není aromatická sloučenina, je meziproduktem v biosyntéze tří aromatických proteinogenních aminokyselin , para -aminobenzoátu a dalších esenciálních aromatických sloučenin. [4] Zdá se, že některé mutanty získané Davisem měly narušenou syntézu šikimátu, zatímco jiné mutanty byly blokovány v pozdějších fázích metabolického procesu.
Pomocí auxotrofních mutantů Escherichia coli , Aerobacter aerogenes a Neurospora crassa a pomocí izotopicky značených sloučenin byla vysledována celá cesta od sacharidových prekurzorů k primárním a sekundárním aromatickým metabolitům. [5] Meziprodukty bylo možné detekovat a izolovat díky skutečnosti, že je nahromadili určití mutanti. Experimenty s mutanty a jimi izolovanými sloučeninami umožnily uspořádat tyto sloučeniny do řetězce a označit místa chybějících metabolitů v tomto řetězci. Bylo mnohem obtížnější stanovit počáteční fáze cesty a propojit ji se známými cestami. Mutovaný kmen Escherichia coli akumulující kyselinu šikimovou v kultivačním médiu byl pěstován na médiu obsahujícím14C - značenou d - glukózu nebo jiné sloučeniny jako jediný zdroj uhlíku. Poté byla izolována kyselina šikimová. Distribuce radioaktivních značek byla stanovena postupnou chemickou degradací. Analýza získaných výsledků vedla k závěru, že tři ze sedmi atomů uhlíku molekuly kyseliny šikimové pocházejí z glykolýzy, zbývající čtyři pocházejí z pentózofosfátové dráhy [6] . Povaha výchozích sloučenin byla objasněna, když byl k dispozici syntetický [7] d -erythrose-4-fosfát. Bylo prokázáno, že buněčné extrakty Escherichia coli snadno převádějí d -erythroso-4-fosfát a fosfoenolpyruvát na dehydrochinát [8] . Nejprve bylo navrženo a poté experimentálně zjištěno, že meziproduktem je sedmiuhlíkový kondenzační produkt, sloučenina nyní známá jako DAHF [9] . Také se pomocí radioizotopových značek ukázalo, že experimentálně pozorovanou téměř kvantitativní transformaci působením bakteriálních buněčných extraktů d -sedoheptulosa-1,7-difosfátu na dehydroshikimát nebo šikimát [10] nelze vysvětlit transformací celé molekuly. , aniž by došlo k jejímu přechodnému štěpení na fragmenty C4 a C3 [ 11 ] .
Velkou část práce na dešifrování cesty provedl Bernard Davis (důležitá průkopnická práce na objasnění metabolických drah pomocí mutantů byla provedena pod jeho vedením v laboratoři pro výzkum tuberkulózy na Cornell Medical College, Manhattan, New York, kterou založil a řídil). ve spolupráci s výzkumníky z Kolumbijské univerzity - Davidem Sprinsonem (1910-2007) a Parithicheri Srinivasan (1927-2012) [12] . Mezi další zaměstnance patří Masayuki Katjiri, Ulrich Weiss, Elisabeth Mingioli, Ivan Salamon, Judith Levine. Významně přispěli ke studiu jednotlivých fází procesu také Australané Frank Gibson (1923–2008), James Pittard a řada dalších badatelů. Úplný obraz metabolické dráhy se stal jasným v letech 1962-1964, kdy Frank Gibson konečně izoloval a studoval látku „ sloučeninu X “ , která dlouho unikala pozorování [Exp. 1] je chybějící meziproduktový metabolit, jehož struktura byla dříve předpovězena ( následně potvrzeno Lloydem Jackmanem pomocí NMR spektroskopie ). Na návrh svého tchána Gibson pojmenoval tuto sloučeninu chorismát (kyselina chorismová). Davisova hypotéza (5-karboxyvinyl-shikimát-3-fosfát, nebo, jak se tehdy říkalo, "Z1-fosfát", prekurzor fenylalaninu, tyrosinu a tryptofanu), byla prokázána, Sprinsonova hypotéza (poslední společný prekurzor tři aromatické aminokyseliny – kyselina fosfošikimová) nebyl potvrzen [13] .
V 50. letech 20. století, jak je popsáno výše, byla založena biosyntetická cesta pro dehydrochinát prostřednictvím DAHF, která byla dlouhou dobu považována za jedinou. V éře genomu se začala hromadit fakta, která vyžadovala vysvětlení. Nejkurióznější bylo, že v mnoha genomech nebyly zjištěny ortology genů biosyntézy dehydroquinátu v přítomnosti ortologů genů pro jeho další metabolismus. Výsledky následných studií metabolických schopností organismů potvrdily předpoklad existence alternativní cesty biosyntézy dehydrochinátu [14] . V roce 2004 byly publikovány výsledky výzkumu amerického biochemika Roberta Whitea o dešifrování biosyntetické dráhy dehydroquinátu prostřednictvím ADTH [15] . Whiteovo hypotetické schéma biosyntézy DKFP (prekurzor ADTH) se však následně nepotvrdilo. V roce 2006 Robert White a Xu Huimin oznámili, že se jim podařilo objasnit skutečnou cestu biosyntézy DKFP u Methanocaldococcus jannaschii [16] .
Název cesty
Název „cesta šikimátu“, také známý jako „cesta kyseliny šikimové“, byl stanoven historicky (studie začala stanovením metabolické role kyseliny šikimové, viz výše). V roce 1979 HG Floss, který si přál zdůraznit klíčovou roli a multipotenci další důležité meziproduktové sloučeniny (chorismatu), navrhl název „cesta chorismatu“. Vzhledem k tomu, že se chorismát nachází, i když na nejdůležitějším, nikoli však jediném místě rozvětvení řetězce chemických přeměn, a vzhledem k tomu, že starý název byl v té době již dobře zavedený, bylo takové přejmenování uznáno za kontraproduktivní a bylo opuštěno. Další možný název, "aromatická cesta", byl také odmítnut, protože mnoho aromatických sloučenin je syntetizováno jinými způsoby, zatímco některé nearomatické produkty jsou syntetizovány z prekurzorů šikimátu, čímž se obchází krok aromatizace. [17]
Podívejte se na přílohu pro roky objevování hlavních sloučenin .
Cesta šikimátu probíhá v buňkách prokaryot ( bakterie i archaea ) a eukaryot ( houby , rostliny , všechny druhy protistů , ale ne zvířata ). U rostlin probíhají reakce šikimátové dráhy v cytosolu a téměř nezávisle [18] v plastidech (hlavně v chloroplastech ), ale geny téměř všech enzymů jsou lokalizovány v jádře ; za normálních růstových podmínek touto cestou protéká asi 20 % veškerého uhlíku absorbovaného rostlinou, [19] [20] v biosférickém měřítku je to podle některých odhadů asi 7 × 10 12 tun za rok [19] . U organismů, jejichž buňky neobsahují plastidy, se šikimátová dráha vyskytuje v cytosolu. Mnohobuněční živočichové ( Metazoa ) nemají enzymový systém šikimátové dráhy, neboť dostávají proteinogenní aromatické aminokyseliny a další potřebné produkty šikimátové dráhy v dostatečném množství s potravou (nebo od symbiontů ), a proto jsou evolucí osvobozeni od potřeba jejich de novo biosyntézy . Na druhou stranu, zbavením se „zbytečných“ již ve fázi svého evolučního vývoje, se živočichové stali závislými na řadě exogenních sloučenin ( esenciální aminokyseliny , významná část vitamínů ) [21] . Zvířata jsou schopna přeměnit hotové aromatické produkty šikimátové dráhy, [22] zejména jsou schopna přeměnit esenciální aminokyselinu fenylalanin na tyrosin, což je neesenciální aminokyselina, za předpokladu dostatečného přísunu fenylalaninu v potravě. Dráhu šikimátu částečně nebo úplně ztratily také některé mikroorganismy žijící výhradně v prostředí bohatém na esenciální látky.
U bakterií mohou tři reakce, které dokončí biosyntézu fenylalaninu, probíhat jak v cytosolu , tak v periplazmatickém prostoru nebo extracelulárně [23] .
V současné době jsou známy dvě cesty pro biosyntézu dehydrochinátu , prekurzoru šikimátu. Toto je klasická cesta přes DAHF a později objevená v archaea prostřednictvím ADTH .
Nejběžnější v organickém světě a první studovanou cestou vzniku dehydrochinátu je cesta jeho biosyntézy z d -erythrose-4-fosfátu a fosfoenolpyruvátu . d -Erythroso-4-fosfát vzniká především v systému transketolázových a transaldolázových reakcí oxidativní a redukční pentózofosfátové dráhy a také u některých mikroorganismů za účasti fosfoketolázy . Fosfoenolpyruvát vzniká v procesu glykolytického štěpení sacharidů a z oxaloacetátu a v řadě organismů také v jednom kroku z pyruvátu . Nejprve dochází k interakci podle typu aldolové kondenzace d -erythrose-4-fosfátu a fosfoenolpyruvátu za vzniku sedmiuhlíkaté sloučeniny 3-deoxy- d - arabino -hept-2-ulozonát-7-fosfát (DAHF , anglicky DAHP , mnoho synonym ). Enzym, který provádí tuto reakci, DAHF syntáza (EC 2.5.1.54), je obvykle reprezentován několika izoformami ; Jsou známy 2 třídy. Dále DAHF podléhá intramolekulární aldolové kondenzaci ( cyklizaci ), která poskytuje dehydrochinát. Reakce je prováděna enzymem 3 -dehydrochinátsyntázou (EC 4.2.3.4), který vyžaduje NAD jako koenzym, který se podílí na reakčním mechanismu, protože při katalytickém aktu se hydroxylová skupina na atomu uhlíku C5 molekula DAHF je nejprve oxidována na karbonyl a dále — obnovení této karbonylové skupiny zpět na hydroxyl (mechanismus, který je charakteristický i pro jiné cyklázy fosforylovaných sacharidů [24] ). Předpokládá se, že DAHF se účastní reakce v hemiketální a- pyranózové formě (z některých důvodů je ve schématu uveden pouze vzorec otevřené keto formy DAHF).
Popsaná biosyntetická cesta pro dehydroquinát je charakteristická pro bakterie , eukaryota a některé archaea .
U mnoha archeí (především zástupců typu Euryarchaeota , patřících do tříd Archaeoglobi , Halobacteria , Methanomicrobia , Methanobacteria , Methanococci , Methanopyri a také typu Thaumarchaeota ) nebyla prokázána aktivita syntázy DAHF a studie jejich genomů jakékoliv ortologové geny DAHF syntázy. Nebyly nalezeny ani ortology genů známé třídy 3-dehydrochinátsyntázy. Následně se ukázalo, že biosyntéza dehydrochinátu u těchto organismů probíhá jiným způsobem. V experimentech na Methanocaldococcus jannaschii bylo zjištěno, že výchozími sloučeninami jsou d -glyceraldehyd-3-fosfát , dihydroxyacetonfosfát , l -aspartát-4-semialdehyd . d -Glyceraldehyd-3-fosfát a dihydroxyacetonfosfát (glyceron-fosfát) se tvoří v buňce různými způsoby, včetně systému transketolázy, transaldolázových reakcí a během glykolytického štěpení sacharidů. l -aspartát-4-semialdehyd, stejně jako jmenované triosafosfáty, nejsou specifickou sloučeninou této metabolické dráhy; vzniká redukcí β-karboxylové skupiny l - aspartátu , je prekurzorem řady proteinogenních aminokyselin ( methionin , threonin , isoleucin a také lysin v jedné ze dvou známých strategií jeho biosyntézy). Štěpením fosfátu z d -glyceraldehyd-3-fosfátu vzniká pyruvaldehyd (methylglyoxal), který pod vlivem fruktóza-1,6-difosfátaldolázy třídy I (enzym s poměrně nízkou substrátovou specifitou) [Vysvětlení. 2] kondenzuje s dihydroxyacetonfosfátem (reaguje ve volné formě nebo ve formě jiných aldolázových substrátů - d -fruktóza-1-fosfát nebo d -fruktóza-1,6-difosfát ) za vzniku 6-deoxy-5-ketofruktózy-1- fosfát (zkr. anglicky DKFP ). DKFP je dále ovlivněna další příbuznou nespecifickou aldolázou (EC 4.1.2.13 / 2.2.1.10) [Exp. 2] interaguje s l -aspartát-4-semialdehydem za vzniku 2-amino-3,7-dideoxy- d - threo -hept-6-ulozonátu (zkr. anglicky ADTH , synonymum: 2-amino-2,3,7 - trideoxy - d - lyxo -hept-6-ulozonát). Posledně jmenovaná sloučenina je oxidativně deaminována a cyklizována na dehydrochinát pod vlivem NAD-dependentního enzymu dehydrochinátsyntázy II (EC 1.4.1.24) [15] . [16]
Šestičlenný karbocyklus vzniklý cyklizací je tedy dále podroben aromatizaci (ve většině případů).
Dehydrochinát lze reverzibilně redukovat NAD-, NADP- a PQQ-dependentními dehydrogenázami na chinát , jehož role v biosyntéze aromatických sloučenin je diskutována (u některých rostlin byl již identifikován enzym chináthydrolyáza, který dehydratuje chinát na šikimát, který umožňuje převést dehydrochinát na šikimát přes chinát, a to nejen přes dehydroshikimát způsobem popsaným níže) [25] . [19] Bylo však přísně prokázáno, že na cestě k prekurzorům nejdůležitějších aromatických sloučenin, pokud to není nutné, je alespoň hlavním (u všech v tomto ohledu dobře prozkoumaných organismech) reverzibilní dehydratace (enzym: 3-dehydrochinátdehydratáza (EC 4.2. 1.10), stereochemie - 1,2 - syn -eliminace pro enzymy typu I a 1,2 -anti -eliminace pro enzymy typu II) [26] dehydrochinátu na dehydroshikimát . V řadě organismů je dehydroshikimát oxidován NADP-dependentní dehydrogenázou na 3,5-didehydroshikimát nebo pod vlivem 3-dehydroshikimát dehydratázy (EC 4.2.1.118) může být reverzibilně dehydratován na aromatickou sloučeninu protokatechut (přes tyto stádia, vznik galátu , pyrokatecholu , pyrogallolu , floroglucinolu , hydroxyhydrochinonu , dalších fenolů ). Ale na cestě k nejdůležitějším aromatickým sloučeninám musí dehydroshikimát projít řadou dalších chemických změn. Dehydroshikimát je reverzibilně redukován NAD-, NADP- a PQQ-dependentními dehydrogenázami na šikimát, následuje ireverzibilní kinázová reakce (enzym: šikimátkináza (EC 2.7.1.71), makroergický donor fosforylové skupiny - ATP ). Výsledný šikimát-3-fosfát (fosfošikimát) interaguje s fosfoenolpyruvátem a vzniká 5-karboxyvinyl-shikimát-3-fosfát (enzym: EPSP syntáza , anglicky EPSP syntáza (EC 2.5.1.19)) . Poslední dvě reakce jsou považovány za přípravné pro následné eliminační reakce , nutné k dokončení π-elektronového sextetu benzenového kruhu (aromatizace). Nevratnou reakcí eliminace fosfátového aniontu vzniká chorismát (enzym: chorismátsyntáza (EC 4.2.3.5) je flavoprotein , kofaktorem je FMN červeň nebo FAD červeň , bifunkční chorismátsyntázy mají také NAD červeň nebo NADP červeň dependentní flavinreduktázovou aktivitu). Stereochemicky probíhá reakce jako 1,4 - anti -eliminace, což naznačuje složitější mechanismus (pravděpodobně radikální, s přihlédnutím ke strukturním vlastnostem substrátu a povaze kofaktorů), než je jednoduchá synchronní konjugovaná eliminace, jinak pravidla orbitální interakce by byly narušeny [27] . V přísném slova smyslu skutečná cesta šikimat končí vytvořením horismatu. Od chorismatu se rozchází nejméně sedm cest vedoucích k aromatickým sloučeninám a souvisejícím chinonům (následující obecný přehled těchto drah odráží hlavní biosyntetickou roli šikimátové dráhy).
Kyselina 3-dehydrochinová Kyselina šikimová Kyselina chorismová Kyselina prefenová Kyselina izochorismová Kyselina anthranilová Kyselina chinová Kyselina protokatechuová para - kyselinaPoznámka k obrázku: Schéma ukazuje různé možné biochemické přeměny, z nichž obvykle nejsou všechny realizovány v konkrétních organismech. Nejdůležitější biochemické přeměny jsou uvedeny, ale rozmanitost možných přeměn není omezena na ně. Přestože některé z reakcí znázorněných v diagramech zde a níže jsou v zásadě reverzibilní (reverzibilita reakcí je zaznamenána v souladu s KEGG Pathway ), rovnováha za fyziologických podmínek může být téměř úplně posunuta v určitém směru v důsledku termodynamických a jiných faktory. Kanonická část šikimátové cesty se nachází v horní třetině obrázku. Malá červená šipka označuje krok blokovaný glyfosátem (EPSP syntázová reakce).
V užším smyslu je šikimátová dráha kaskádou 7 enzymatických reakcí vedoucích ke vzniku chorismátu, společného prekurzoru řady důležitých sloučenin. Stručné informace o těchto reakcích jsou shrnuty v tabulce, která je součástí přílohy.
U volně žijících živočichů bylo identifikováno nejméně sedm různých cest, které se liší od chorismátu a vedou k aromatickým sloučeninám, stejně jako souvisejícím chinonům:
Jsou známy i další přeměny chorismatu, například esterová vazba přítomná v jeho struktuře může podléhat hydrolýze. Toto je cesta k alicyklické sloučenině ( 1R , 3R , 4R )-3,4-dihydroxycyklohexan-1-karboxylát (prekurzor-startér v biosyntéze rapamycinu , takrolimu , askomycinu atd.) [28] . Biosyntéza cyklohexylkarbonyl-CoA (prekurzor asukamycinu , selamektinu , ansatrieninu A , [29] ω-cyklohexyl-mastných kyselin [29] a dalších sloučenin) může začít podobně.
Cesta přes prephenateK izomerizaci chorismátu na prefenát dochází v důsledku [3,3] -sigmatropního přeskupení připomínajícího Claisenův přesmyk (v širším slova smyslu jde o Claisenův přesmyk). Tato reakce může nastat spontánně (tepelně), okyselení média a ohřev ji urychlí. Enzym chorismátmutáza (EC 5.4.99.5) za fyziologických podmínek urychluje reakci 2×10 6krát [ 27] .
Reakce dehydratační dekarboxylace (mechanismem je konjugovaná eliminace) prefenátu vede k fenylpyruvátu . Tato reakce je schopna probíhat spontánně (tepelně je kyselé prostředí silným katalyzátorem), pro její urychlení existují enzymy: specifická prefenátdehydratáza (EC 4.2.1.51) a nespecifická karboxycyklohexadienyldehydratáza (EC 4.2.1.91). Reverzibilní transaminací fenylpyruvátu vzniká proteinogenní aminokyselina fenylalanin .
Oxidační dekarboxylace (oxidační činidlo - NAD ox nebo NADP ox , enzymy - prefenátdehydrogenáza) prefenátu vede k 4-hydroxyfenylpyruvátu , jehož reverzibilní transaminací vzniká proteinogenní aminokyselina tyrosin .
Známá je i cesta k fenylalaninu a tyrosinu přes arogenát (pretyrosin). Arogenát se získá transaminací prefenátu. Dehydratační dekarboxylace arogenátu vede k fenylalaninu a oxidativní dekarboxylace (oxidační činidlo - NAD ox nebo NADP ox ) arogenátu vede k tyrosinu. U zelených rostlin a sinic obvykle převládá cesta biosyntézy fenylalaninu a/nebo tyrosinu přes arogenát.
U některých organismů (mutanti Neurospora crassa atd. ) byly nalezeny spiroarogenát ( laktamový derivát arogenátu) a d - prefenyllaktát ( derivát prefenátu s redukovaným karbonylem ), které jsou rovněž náchylné k aromatizaci. [třicet]
Mnoho organismů, včetně zvířat a lidí, má enzym aerobní tetrahydrobiopterin -dependentní fenylalanin-4-monooxygenázu (synonymum: fenylalanin-4-hydroxyláza, EC 1.14.16.1), který provádí jednosměrnou hydroxylaci fenylalaninu na tyrosin.
Z fenylpyruvátu, 4-hydroxyfenylpyruvátu, fenylalaninu, tyrosinu a jejich metabolických produktů vzniká obrovské množství různých aromatických sloučenin ( fenylpropanoidy , katecholaminy , různé peptidy , mnoho alkaloidů ( isochinolin , tropan , protoalkaloidy), mnoho glykosidů , nejznámější kumariny ) , koenzymy PQQ a F420 , ligniny , melaniny a mnoho dalších). 4-Hydroxyfenylpyruvát se oxiduje (za současné migrace a dekarboxylace ketokarboxyethylového substituentu) na homogentisát , který je prekurzorem tokoferolů , plastochinon . Benzoát , p - hydroxybenzoát , salicylát , protokatechát , phanylacetát , hydrochinon mohou být produkty biologického rozkladu sloučenin syntetizovaných prefenátem, kromě toho p -hydroxybenzoát, salicylát a hydrochinon mohou být syntetizovány z chorismátu jinými cestami.
The Path Through AnthranilátAntranilát je syntetizován z chorismátu enzymem antranilátsyntáza (EC 4.1.3.27). Donorem aminoskupiny je amidový dusík glutaminu nebo amonia . Antranilát je prekurzorem indolu a proteinogenní aminokyseliny tryptofanu .
Poslední tři jmenované sloučeniny jsou prekurzory mnoha sloučenin: indol , chinolin , chinazolin , akridonové alkaloidy, benzoxazinoidy atd . Například antranilát slouží jako prekurzor tzv . pyo formylkarbostyrilu), indol je prekurzorem indikanu a antibiotikum pyrrolnitrin se syntetizuje z tryptofanu. Pyrokatechin (katechol) vzniká jako výsledek dekarboxylace protokatechátu a může být také syntetizován z antranilátu, ze salicylátu.
Cesta přes antranilát je blízká cestě přes 2-amino-4-deoxychorismat; tyto dráhy jsou považovány za nezávislé, protože antranilát a 2-amino-4-deoxychorismat jsou produkovány z chorismátu různými enzymy.
Cesta přes 2-amino-4-deoxychorismatEnzym 2-amino-4-deoxychorismatsyntáza (EC 2.6.1.86) produkuje z chorismatu 2-amino-4-deoxychorismat (2-amino-2-deoxyisochorismát, zkr. ADIC ) a otevírá cestu ke strukturním derivátům fenazinu . Donorem aminoskupiny je amidový dusík glutaminu . Dále dochází k enzymatické hydrolýze esterové vazby 2-amino-4-deoxychorismatu, která poskytuje ( 5S , 6S )-6-amino-5-hydroxycyklohexa-1,3-dien-1-karboxylát, který je dále pod vliv enzymu (EC 5.3 .3.-) isomerizuje na (1 R , 6S )-6-amino-5-ketocyklohexa-2-en-1-karboxylát. Posledně jmenovaná sloučenina prochází diagonálně symetrickou dimerizací, jejímž výsledkem je prekurzor s předem vytvořenou strukturou fenazinových sloučenin. Výsledkem dalších metabolických přeměn této sloučeniny v bakteriích je tvorba pigmentů a antibiotik fenazinové řady, včetně nesubstituovaného fenazinu , žlutého fenazinkarboxylátu, 2-hydroxyfenazinu, modrého nefluorescenčního pigmentu s antibiotickou aktivitou pyocyaninu ( Pseudomonas aeruginosa ) , safenamyciny , esmeraldiny (dimerní fenaziny) [31] .
Různé sady fenazinových sloučenin jsou produkovány různými bakteriemi ( Pseudomonas , Streptomyces , Nocardia , Sorangium , Brevibacterium , Burkholderia , Erwinia , Vibrio , Pelagiobacter , Brevibacterium , Pantoea agglomerans , atd.), mezi sloučeninami Meinafenazinethanarcosa . Fenazinový operon ( phz -operon) obvykle obsahuje gen phz C. Tento gen kóduje DAHF syntázu II. třídy, která je strukturálně velmi odlišná od aminokyselinami regulovaných DAHF syntáz I. třídy (prokaryotická DAHF syntáza PhzC je strukturálně bližší DAHF syntázám vyšších rostlin (patří také do třídy II) než prokaryotických DAHF syntáz I. třídy (AroF, AroG, AroH), ke kterým jsou kvasinkové DAHF syntázy homologní). Vzhledem k tomu, že phzoperon obsahuje samostatný gen s funkcí DAHF-syntázy, je zřejmé, že výměna fenazinů může mít silný regulační účinek na celou dráhu šikimátu [31] .
Sloučeniny fenazinu jsou strukturní deriváty chinoxalinu (benzpyrazinu). Z tryptofanu lze také syntetizovat určité strukturní deriváty chinoxalinu.
Je znám flavoprotein (obsahuje FMN , EC 1.3.99.24), který oxiduje 2-amino-4-deoxychorismat na 3-(karboxyvinyloxy)-anthranilát, který je součástí struktury některých endiynových antibiotik při jejich biosyntéze. Přes antranilát mohou vznikat také prekurzory endiynových antibiotik.
Cesta přes 4-amino-4-deoxychorismatIzomerní antranilát para - aminobenzoát je syntetizován z chorismátu přes 4-amino-4-deoxychorismat (zkr. anglicky ADC ) enzymem para -aminobenzoát syntáza (EC 2.6.1.85 + EC 4.1.3.38). Donorem aminoskupiny je amidový dusík glutaminu. para -aminobenzoát je prekurzorem koenzymů folátové řady ( THF , THMPT atd.). para -aminobenzoát a jeho metabolické deriváty jsou startovacími jednotkami biosyntézy některých antibiotik ( kandicidin-D , chachimyciny (tricomycin), levorin aj.), zbytek para -aminobenzoátu je součástí antibiotik plicacetin , norplicacetin , amycetin , bamycetin , atd. Oxidací aminoskupiny vzniká para -aminobenzoát, para -nitrobenzoát , který je ve složení thioetheru s koenzymem A prekurzorem-startérem biosyntézy aureotinu [32] . Spontánní nebo enzymatická hydrolýza esterové vazby 4-amino-4-deoxychorismatu vede k ( 3R , 4R )-4-amino-3-dihydroxycyklohexa-1,5-dien-1-karboxylátu. V některých mikroorganismech byl identifikován enzym, který katalyzuje podobný chorismátmutáza [3,3]-sigmatropní přesmyk 4-amino-4-deoxychorismatu na 4-amino-4-deoxyprefenát [23] . Tato reakce představuje krok v biosyntéze neproteinogenní aminokyseliny para -aminofenylalaninu . para -Aminofenylalanin je prekurzorem několika známých antibiotik, ze kterého vzniká 4-(dimethylamino)-fenylalanin (zbytek je součástí struktury některých cyklických peptidových antibiotik, např. pristinamycin - IA), [33] odst . -nitrofenylserinol (prekurzor chloramfenikolu ) [34] .
Cesta přes para - hydroxybenzoátChorismát pyruvát lyáza (EC 4.1.3.40) katalyzuje eliminaci pyruvátu z chorismátu , což vede k para - hydroxybenzoátu . Toto není jediný způsob biosyntézy para - hydroxybenzoátu, který může být také vytvořen z fenylalaninu a tyrosinu přes para -kumarát (rostliny, zvířata, mnoho bakterií). para -Hydroxybenzoát je prekurzorem ubichinonu, [35] rostlinných glykosidů , shikoninu a dalších sloučenin.
Cesta přes izochorismatChorismáthydroxymutáza (isochorismátsyntáza, EC 5.4.4.2) provádí reverzibilní izomeraci chorismátu na izochorismát . Isochorismat je prekurzorem salicylátu , 2,3-dihydroxybenzoátu (pyrocatechat) [ 36] (prekurzor sideroforických sloučenin, jako jsou enterobaktiny ), ortho -sukcinylbenzoátu (prekurzor menachinonů, fylochinonů , stejně jako alizarinu , juglone , lawson , dunnion , mollugin ), mnoho dalších sloučenin. Z izochorismátu se salicylát syntetizuje eliminací pyruvátu (hlavní, ale ne jediný způsob biosyntézy salicylátu). Jsou známy pericyklické i nepericyklické mechanismy této reakce a byly popsány oba odpovídající typy enzymatické aktivity [ 37] . [38] U některých organismů je známo, že enzym (isochorismátmutáza) katalyzuje [3,3]-sigmatropické přeskupení isochorismátu na isoprefenát [39] . [23] Z izoprefenátu vznikají neproteinogenní aminokyseliny meta - karboxyfenylalanin a meta - karboxytyrosin, sekundární metabolity vyšších rostlin ( Nicotiana silvestris , Iris sp. aj.) [40] . [39] [41] Isoprefenát je nejpravděpodobnějším prekurzorem 3-formyltyrosinu nalezeného v Pseudoalteromonas tunicata [42] .
Kyselina izochorismová kyselina ortho -sukcinylbenzoováBioinformatická analýza sekvenovaných genomů vedla u některých prokaryot ( Streptomyces spp. , Helicobacter pylori , Campylobacter jejuni ) k objevení další cesty od chorismátu k menachinonům. Na začátku této dráhy vzniká futalosin (aminodeoxyfutalosin) z chorismátu, inosinu ( adenosinu ) a fosfoenolpyruvátu během enzymatické reakce [43] . [44]
Při syntéze menachinonů přes izochorismátovou a futalosinovou dráhu je pozorován odlišný charakter inkluze do struktury skupin atomů, které tvoří kostru výchozích sloučenin (v těchto drahách je dokončen druhý (chinoidní) karbocyklus ke karbocyklu chorismátu z různých stran) [43] [45] .
Šikimátová dráha je specializovanou cestou pro biosyntézu aromatických sloučenin, ale lze ji považovat za zdroj řady nearomatických sloučenin. Jedná se především o sloučeniny vzniklé z aromatických produktů šikimátové dráhy v důsledku jejich ztráty aromaticity. Příkladem je diene-isokyanidové antibiotikum (produkované Trichoderma hamatum ), jehož prekurzorem je tyrosin: [46]
Jiný příklad: fenylacetát (produkt metabolických přeměn fenylpyruvátu a fenylalaninu) je biosyntetickým prekurzorem některých strukturních derivátů cykloheptanu (ω-cykloheptyl-mastné kyseliny) [29] [47] .
V jiných případech mohou benzenové kruhy šikimátového původu ztratit aromaticitu, aniž by došlo k porušení nebo přeskupení uhlíkové kostry. Rhodopseudomonas palustris je tedy schopen využívat aromatické sloučeniny, zejména dearomatizuje benzoát, hydrogenuje jej na cyklohex-1-en-1-karboxylát za fototrofních anaerobních podmínek (další využití druhého je schopno pokrýt potřebu uhlíku buňky) [ 48] . Sinicový dipeptid radiosumin sestává z modifikovaných aminokyselinových zbytků, které jsou pravděpodobně metabolickými deriváty para - aminofenylalaninu s částečně hydrogenovanými kruhy [49] . Současně bylo zjištěno, že vnitřní biosyntetické dráhy různých nearomatických strukturních derivátů aromatických aminokyselin, jako je 2,5-dihydrofenylalanin, [50] [51] 2,5-dihydrotyrosin, [51] tetrahydrofenylalanin , [50] [51] tetrahydrotyrosin, [51] [52] [53] 2,5-dihydrostilben, [51] 2-karboxy-6-hydroxyoktahydroindol [50] [51] (strukturní složka sinicového peptidu eruginosinu ) , [50] antikapsin [51] [52] [53] [54] (prekurzor bacilizinu ), [50] [52] [53] [54] pocházejí z prefenátu. Známý enzym, prefenátdekarboxyláza, se účastní syntézy těchto sloučenin a dekarboxyluje prefenát bez současné dehydratace nebo oxidace, čímž se zabrání aromatizaci, která je charakteristická pro známější metabolické přeměny prefenátu [52] . [50] [51] Z prefenátu vzniká také ketomycin (antibiotikum s alicyklickou strukturou) [55] .
Známé jsou také nearomatické produkty, syntetizované z relativně raných nearomatických meziproduktů šikimátové dráhy. Příklady takových produktů zahrnují mykosporiny (mykosporinům podobné aminokyseliny), které se nacházejí v taxonomicky odlišných mořských, sladkovodních a suchozemských organismech. Jedna z metabolických drah vedoucích k mykosporinům odbočuje ze šikimátové dráhy na úrovni dehydrochinátu. Existence této cesty byla prokázána v experimentech s ascomycetou Trichothecium roseum [56] . Další identifikovaná ( Cyaneans : Nostoc punctiforme , Chlorogloeopsis sp. ) cesta biosyntézy mykosporinů nevyužívá meziprodukty šikimátové dráhy, ale probíhá za účasti 2 - epi -5- epi - valiolon syntázy, homologu 3-dehydrochinátsyntázy. Mateřskou sloučeninou je d -sedoheptulóza-7-fosfát, centrální metabolit, sloučenina, která má určité strukturní podobnosti s DAHF [57] .
Známé jsou také produkty interakce aromatických produktů šikimátové dráhy s nearomatickými meziprodukty šikimátové dráhy. 5 - O - kofeoylshikimát (daktylyfrát) a 3- O -kafeoylshikimát (neodaktylyfrat) jsou tedy kyselina šikimová, ve které je C5-hydroxyl (resp. C3-hydroxyl) esterifikovaný zbytkem aromatické kyseliny kávové [58] . Známé deriváty chinátu podobné struktury jsou chlorogenát a neochlorogenát [59] .
Termochemie a kinetika jednotlivých reakcí šikimátové dráhy jsou dobře známy. Byly provedeny speciální termodynamické studie a výpočty. Níže jsou uvedeny údaje o jednotlivých reakcích.
1 ). Termodynamika syntázové reakce DAHF [60] [61]
FEP ( aq ) + d -E4F ( aq ) + H20 ( 1 ) = DAHF ( aq ) + F ( aq )
( C 3 H 2 O 6 P ) 3 − ( aq ) + ( C 4 H 7 O 7 P ) 2 − ( aq ) + H 2 O ( l ) = ( C 7 H 10 O 10 P ) 3 − ( aq ) + ( H0 4 P ) 2− ( aq )
Tepelný účinek reakce (změna entalpie systému, molární entalpie reakce), měřeno kalorimetricky při T = 298,15 K , pH = 8,18, Im = 0,090 mol/kg , Tris + HCl pufr ; ustálená zdánlivá rovnovážná konstanta K′ > 1,4•10 3 :
Δ r H m (cal) = −(67,7 ± 1,5) kJ/mol
Vypočtená standardní molární entalpie reakce (T = 298,15 K a I m = 0):
Δ r H ɵ m = −(70,0 ± 3,0) kJ/mol (~ −17 kcal/mol)
Vypočtená standardní Gibbsova molární volná energie reakce (T = 298,15 K a I m = 0):
Δ r G ɵ m ≈ −39 kJ/mol
Vypočtená ( ) rovnovážná konstanta (T = 298,15 K a I m = 0):
K ɵ ≈ 7•10 6
2). Termodynamika reakce 3-dehydrochinátsyntázy [61] [62]
DAHF ( aq ) = DHQ ( aq ) + F ( aq )
( C7H10O10P ) 3− ( aq ) = ( C7H9O6 ) − ( aq ) + ( H04P ) 2− ( aq ) _ _ _ _ _ _ _ _ _ _
Tepelný účinek reakce, měřený kalorimetricky ( HEPES + NaOH pufr, T = 298,15 K, pH = 7,46, I m = 0,070 mol/kg):
Δ r H m (cal) = −(50,9 ± 1,1) kJ/mol
Vypočtená standardní molární entalpie reakce (T = 298,15 K a I m = 0):
Δ r H ɵ m = −(51,1 ± 4,5) kJ/mol (~ −12 kcal/mol)
Vypočtená rovnovážná konstanta (T = 298,15 K a I m = 0):
K ≈ 2•10 14
3). Termodynamika 3-dehydrochinát-dehydratázové reakce [61] [62]
DHQ ( aq ) = DHS ( aq ) + H2O ( 1 )
( C 7 H 9 O 6 ) − ( aq ) = ( C 7 H 7 O 5 ) − ( aq ) + H 2 O ( l )
Tepelný účinek reakce, měřený kalorimetricky (HEPES + NaOH pufr, T = 298,15 K, pH = 7,42, I m = 0,069 mol/kg):
A r H m (cal) = 2,3 ± 2,3 kJ/mol
Vypočtená standardní molární entalpie reakce (T = 298,15 K a I m = 0):
Δ r H ɵ m = 2,3 ± 2,3 kJ/mol (~ 0,5 kcal/mol)
Vypočtená rovnovážná konstanta (T = 298,15 K a I m = 0):
K = 4,6 ± 1,5
čtyři). Termodynamika reakce šikimátdehydrogenázy [61]
šikimát( aq ) + NADP( aq ) = dehydroshikimát( aq ) + NADPH( aq )
Na základě spektrofotometrických dat byly získány následující hodnoty rovnovážných konstant pro tuto reakci:
K' = 0,097 (T = 298,15 K, pH = 7,6)
K' = 0,18 (T = 303,15 K, pH = 7,8, Tris + HCl pufr)
K' = 0,175 (T = 303,15 K, pH = 7,9, Tris 0,067 mol/dm3 pufr )
K' = 0,036 (T = 303,15 K, pH = 7,0, Tris + HCl pufr)
K' = 0,0361 (T = 303,15 K, pH = 7,0, Tris 0,067 mol/dm3 pufr )
osm). Termodynamika reakce chorismátmutázy [61] [63] [64]
horismat( aq ) = prephenate( aq )
Vypočtené (s využitím teorie molekulárních orbitalů ) hodnoty aktivační energie chorismátu v plynné fázi:
Dianiontová forma: 277,4 kJ/mol ( konformace stavu židle ), 282,8 kJ/mol (konformace lázně). Protonace stabilizuje přechodné formy: aktivační energie pro konformaci „židle“ a „lázňovou“ konformaci dikyselinové formy nabývá hodnot 247,3 kJ/mol, respektive 248,5 kJ/mol, ve vodném roztoku dokáže pokles na 86,6 kJ/mol. Protože rozdíly v aktivačních energiích jsou nevýznamné, je obtížné určit převládající cestu (přes „křeslo“ nebo přes „lázni“) neenzymatické přeměny chorismátu na prefenát. Chorismatmutase, který má největší afinitu ke konkrétnímu přechodnému stavu, využívá cestu přes „židle“.
Tepelný účinek reakce, měřený kalorimetricky (T = 298,15 K):
Δ r H m (cal) = −(55,4 ± 2,3) kJ/mol (~ −13 kcal/mol)
Hodnota tepelného efektu (−46,4 kJ/mol) získaná pomocí kvantově mechanických výpočtů je v dobré shodě s experimentálně naměřenou, což potvrzuje jak dostatečně hluboké pochopení podstaty této reakce, tak i adekvátnost teoretických modelů použitých pro výpočty.
Odhadovaná hodnota standardní molární entropie reakce:
Δ r S ɵ m ≈ 3 J/mol·K
Vypočtená standardní molární Gibbsova energie reakce (T = 298,15 K):
Δ r G ɵ m ≈ −56 kJ/mol
Odhadovaná rovnovážná konstanta:
K ≈ 7•10 9 (pro konverzi chorismátu 2− ( aq ) na prefenát 2− ( aq ) při T = 298,15 K). Pro všechny praktické účely lze tuto reakci považovat za nevratnou, zatímco schémata KEGG Pathway označují reakci jako reverzibilní.
Kromě zřejmých spojení s cestami, které produkují původní sloučeniny šikimátové dráhy, lze na samostatných příkladech zdůraznit další druhy spojení s jinými metabolickými cestami.
Některé sloučeniny mohou být syntetizovány cestou šikimátu, ale tato cesta pro ně není jedinou možnou biosyntetickou cestou.
V některých organismech tak může být protokatechát syntetizován z dehydroshikimátu (hlavně při jeho katabolickém využití). Protokatechát je také typickým metabolitem vznikajícím při biodegradaci aromatických a hydroaromatických sloučenin různého původu. Například produkt polyketidové dráhy 6-methylsalicylát pod vlivem 6-methylsalicylátdekarboxylázy (EC 4.1.1.52) je dekarboxylován na meta- kresol , který sérií oxidačních reakcí methylové skupiny NADP- závislé dehydrogenázy, mohou poskytnout protokatechát.
Kyselina protokatechuová je jedním z hlavních meziproduktů biologického rozkladu takových sloučenin, jako je toluen, [65] PAH, [66] benzoová, [67] kyselina ftalová a tereftalová [66] , některá aza barviva [68] a další sloučeniny.
V rostlinách se galát tvoří v reakcích dráhy kyseliny šikimové, ale u hub může být tato sloučenina syntetizována cestou polyketidu. [69]
Jiný druh interakce metabolických drah lze zaznamenat při syntéze někdy samostatně izolovaných tzv. sloučenin smíšené (dráhy) biosyntézy. Jako příklad takových sloučenin smíšené biosyntézy lze jmenovat terpenoidní chinony, v jejichž složení molekul lze snadno rozlišit mezi cyklickou strukturou šikimátového původu a isoprenoidním postranním řetězcem. Struktura mnoha přírodních sloučenin obsahuje benzenové kruhy syntetizované různými způsoby, včetně šikimátových a polyketidových drah. Dobře známým příkladem sloučenin tohoto typu jsou flavonoidy , ve kterých je kruh B šikimátového původu a kruh A je tvořen polyketidovou cestou.
Kromě biosyntetické šikimátové dráhy existuje také chinát-šikimátová katabolická dráha (někdy také nazývaná hydroaromatická dráha), která je zodpovědná za rychlé využití nadbytečného množství chininové, šikimové a dehydroshikimové kyseliny. Přebytečný šikimát a chinát, které mohou vstoupit do buňky exogenně prostřednictvím speciálních nosičů, se v důsledku reverzibilních reakcí přemění na dehydroshikimát, který se dále dehydratuje na protokatechát (tyto reakce byly již zmíněny výše). Protokatechát je dále degradován dioxygenázou orto -štěpením na 3-ketoadipát, který se následně rozkládá na substráty Krebsova cyklu (acetyl-CoA, sukcinyl-CoA) - tzv. ketoadipátová dráha . Protokatechát, který je podroben meta -štěpení dioxygenázou, degraduje na pyruvát a formiát (méně obvyklý způsob disimilace protokatechátu). U hub ( Neurospora crassa ) [70] a bakterií ( Corynebacterium glutamicum ) [71] je známa indukovatelná katabolická dráha chinát-shikimát . Pomocí katabolické dráhy chinát-shikimát jsou tyto organismy schopny růst s použitím kyseliny chininové nebo šikimové jako jediného zdroje uhlíku a energie.
Stručné informace o enzymech a reakcích, které katalyzují, jsou shrnuty v tabulce, která je součástí přílohy.
Prokaryotické geny odpovědné za sedm reakcí, které tvoří cestu od d -erytróza-4-fosfátu a fosfoenolpyruvátu k chorismátu, se ve většině případů nazývají geny aro ( aro A , aro B , aro C , aro D , aro E , aro F , aro G , aro H , aro K , aro L , aro Q , aro 1 , aro B-1 , aro B-2 , aro DE , aro KB a některé další). Geny odpovědné za tvorbu fenylalaninu a tyrosinu z chorismátu jsou geny phe a tyr ( phe A, phe C, tyr A, tyr Aa, tyr B atd.), geny biosyntézy tryptofanu jsou geny trp ( trp A, trp B, trp C, trp D, trp E, trp F, trp G, trp CF, trp EG, trp GD atd.). Geny qui A , qui B , qut E , qa- 3 , ydi B , shi A a některé další mohou být také nezbytné pro dráhu šikimátu . Některé aro- , phe- a trp- geny přímo nesouvisejí se zde uvažovanými biochemickými procesy, ale nepřímo je ovlivňují. Například aro P je gen zodpovědný za transport aromatických aminokyselin, phe P je gen kódující permeázu specifickou pro fenylalanin , phe S, phe T, tyr S, trp S jsou geny pro odpovídající aminoacyl-tRNA syntetázy ( podjednotky v případě fenylalaninu) . Funkce genů aro I, aro M (nezaměňovat s eukaryotickým supergenem arom ) nebyla stanovena (k září 1998), nicméně prostředí (včetně domnělých regulačních oblastí) těchto genů naznačuje, že jsou nějak funkčně souvisí s výměnou aromatických sloučenin. Pro rostlinné geny byl navržen název shk -genes [19] .
Geny šikimátové dráhy jsou široce rozptýleny po celém genomu a následují v jiném pořadí i u poměrně blízkých druhů, zpravidla nejsou součástí jednoho regulonu (ačkoli tendence ke shlukování je pozorována u archaických genomů). V genomu archaebakterie Halobacterium salinarum jsou zahrnuty geny pro počáteční stadia šikimátové dráhy (OE1472F, paralogový gen fba 2, fruktóza-1,6-difosfátaldoláza třídy I a OE1475F, gen dehydrochinátsyntázy II). tryptofanový operon. Pseudogenes jsou také známé . U lactobacillus Lactobacillus delbrueckii subsp. , který nemá šikimátovou dráhu . bulgaricus ATCC 11842, například existují pseudogeny aro A(pseudo), aro C(pseudo), aro K(pseudo).
U vyšších rostlin jsou geny šikimátové dráhy lokalizovány v jaderných chromozomech a obsahují charakteristické plastidové signální sekvence (kódující vedoucí N-koncovou signální sekvenci polypeptidu) nezbytné pro transport proteinových produktů těchto genů do plastidů. [72]
Pro plné fungování enzymového systému šikimátové dráhy je nutná přítomnost určité sady kofaktorů, včetně iontů kovů s dvojitým nábojem (Mg 2+ , Ca 2+ , Mn 2+ , Fe 2+ , Co 2+ , Ni2 + , Cu2 + , Zn2 + atd.). Jednotlivé enzymy mohou být náročné na přítomnost určitého iontu v médiu, jiné ionty mohou působit inhibičně, v případě jiných enzymů jsou tyto ionty do určité míry zaměnitelné. Enzymy pocházející z různých organismů a někdy isoenzymy stejného organismu se mohou velmi lišit ve vztahu k aktivačním iontům. Například dehydrochinátsyntáza Pyrococcus furiosus vykazuje maximální aktivitu v přítomnosti Cd 2+ (v přítomnosti jakéhokoli jiného iontu je aktivita nižší nebo chybí), u dehydrochinátsyntáz z jiných zdrojů jsou takové nároky na přítomnost kadmiových kationtů. nepozorováno [73] .
Téměř všechny popsané enzymy samotné šikimátové dráhy (7 reakcí) jsou monomerní, nebo se jedná o homodimerní, homotetramerní, homohexamerní proteiny s počtem aktivních center odpovídajícím počtu podjednotek. Mezi různými enzymy pro další přeměny chorismatu jsou heteromerní proteiny. Nekovalentní enzymové komplexy také existují a byly charakterizovány (např. DAHF syntáza/chorismatmutáza + šikimátkináza v Bacillus subtilis ).
Enzymy šikimátové dráhy jsou v mnoha případech multifunkční. Tyto proteiny jsou produkty fúzovaných genů . Mezi enzymy šikimátové dráhy jsou známy následující bifunkční proteiny:
Trifunkční proteiny:
Multifunkční proteiny jsou také dobře známé mezi enzymy pro další transformace chorismátu:
U eukaryot ( protistů , hub ) je znám cytoplazmatický pentafunkční protein arom (produkt arom -supergenu), který se v jednom polypeptidovém řetězci kombinuje s 3-dehydrochinátsyntázou (EC 4.2.3.4), 3-fosfošikimát-1- karboxyvinyl aktivity transferázy (EC 2.5 .1.19), šikimátkinázy (EC 2.7.1.71), 3-dehydrochinátdehydratázy (EC 4.2.1.10, typ I) a šikimátdehydrogenázy (EC 1.1.1.25) (domény jsou uvedeny v pořadí od N -konec). Arom protein tedy provádí všech pět reakcí na cestě z DAHF k 5-karboxyvinyl-shikimát-3-fosfátu. Arom protein Rhizoctonia solani (původce kořenové hniloby zemědělských rostlin) se skládá z 1618 aminokyselinových zbytků a má hmotnost 173 kDa, v plně funkčním stavu obsahuje kromě dalších nezbytných kofaktorů (NAD ox ) dva zinkové ionty Zn 2+ [74] .
Organizace v genomech nejvýznamnějších modelových organismů (byly vybrány evolučně nejvzdálenější organismy, vybrány nejstudovanější kmeny):
Umístění genů aro v chromozomu ( nukleoid , kruhová molekula DNA, 4,6 milionů párů bází) Escherichia coli K-12 ( Escherichia coli str. K-12 substr. MG1655):
aro P ( transkripce : ←, funkce: transport aromatických aminokyselin, chromozomální poloha: 120178..121551, tradiční umístění na mapě : 2.6), aro L (→, šikimát kináza, 406405..406929, 8.7) , aro M (→, funkce neznámá, 407428..408105, 8.8), aro G ( →, fenylalaninem regulovaná DAHF syntáza, 785633..786685, 16.9), aro A (→, EPSP syntáza, 958812..960075, 2 , mutanty rezistentní vůči kyselině indolakrylové, transport, 28.3), aro D (→, 3-dehydrochinát dehydratáza, 1774686..1775444, 38.2), aro H (→, tryptofanem regulovaná DAHF syntáza, 1788435..17895.81 C (←, chorismát syntáza, 2446388..2447473, 52.7), aro F (←, DAHF-syntáza, regulovaný tyrosin, 2740080..2741150, 59.0), aro E (←, dehydroshikimát redukt.34703839.8. , aro KB (←, šikimátkináza/3-dehydrochinátsyntáza, 3517398..3519064, 75,8), aro I (—, funkce neznámá, 84,2) [75] . [76] [77]
Umístění genů šikimátové dráhy v chromozomu (nukleoid, kruhová molekula DNA, 5842795 párů bází) Microcystis aeruginosa NIES-843:
ccm A (transkripce: →, funkce: DAHF syntáza, chromozomální pozice: 557559..558614), aro A (→, EPSF syntáza, 1380521..1381861), aro C (←, chorismát syntáza, 170779083.), 370779083 . K (→, šikimát kináza, 1927033..1927605), aro B ( →, 3-dehydrochinátsyntáza, 2361918..2363018), aro Q (←, 3-arochinátdehydratáza, 2783501..2783 šikimát dehydrogenáza, 3416423..3417283) [78] .
Umístění genů šikimátové dráhy na chromozomu (nukleoidní, lineární nebo pseudokruhová molekula DNA, 9025608 párů bází) Streptomyces avermitilis MA-4680 :
aro E (funkce: šikimát dehydrogenáza, chromozomální poloha: 2173767..2174642, komplement), aro A (EPSP syntáza, 3800068..3801408), aro G (DAHF syntáza, 7323905..732529 dehydratáza , 732529 dehydroáza, 7325257 ..7539270), aro E (shikimát dehydrogenáza, 8180666..8181502), aro C (chorismatsyntáza, 8181892..8183076), aro K (shikimát kináza, 8183073..8th - 818358 synáza,818358 ..8184676) [79] .
Umístění genů šikimátové dráhy v chromozomu (nukleoid, kruhová molekula DNA, 4093599 párů bází) Bacillus subtilis BSn5 :
BSn5_01775 (transkripce: ←, funkce: EPSP syntáza, pozice v chromozomu: 345012..346298), aro B (←, 3-dehydrochinátsyntáza, 355073..356161), BSn5_018161syntáza,3flasyntáza,61flasa/30 .357333), aro D (←, dehydrochinát dehydratáza, 389768..390535), BSn5_02785 (←, dehydrochinát dehydratáza, 518894..519340), aro E (←, shikimát dehydrogenáza,24DA_0,5272BS.56n) syntáza/chorismatmutáza, 1053966..1055042), aroK ( →, šikimátkináza, 2554497..2555057) [80] .
Umístění genů šikimátové dráhy v chromozomu (nukleoid, kruhová molekula DNA, 1664970 bp) Methanocaldococcus jannaschii DSM 2661:
MJ_0246 (transkripce: ←, funkce: chorismátmutáza, pozice v chromozomu: 233695..233994), MJ_0400 (→, ortolog fruktóza-bisfosfátaldoláza, 361590..362411), MJ_050.42 (MJ_050.42) , MJ_1084 ( aro E) (→, šikimátdehydrogenáza, 1022757..1023605), MJ_1175 (←, chorismátsyntáza, 1113783..1114919), MJ_1249 (→4,4,4,91111112quinas,9_2 šikimátkináza (nadrodina GHMP-kináz), 1407283..1408131), MJ_1454 (aroD ) (←, 3-dehydrochinát dehydratáza, 1423963..1424625) [81] .
Umístění genů šikimátové dráhy v chromozomu (nukleoid, kruhová molekula DNA, 1669696 párů bází) Aeropyrum pernix K1:
aro C (transkripce: ←, funkce: chorismátsyntáza, pozice v chromozomu: 384859..386001), aro A (←, EPSF syntáza, 385991..387274), aro K (← , shikimátkináza (GHHMP)-kináza , 387262..388104), aro E (←, šikimát dehydrogenáza, 388104..388925), aro D (←, dehydrochinát dehydratáza, 388922..389590), aro B (←, 3-dehydrochinát syntéza 3904..97.3) , aro G (←, DAHF syntáza, 390655..391467), aro A (←, EPSF syntáza, 892465..893724) [82] .
Umístění genů šikimátové dráhy v chromozomech Saccharomyces cerevisiae S288c ( haploidní počet chromozomů je 16): [83]
Gen | Produkt (funkce) | Chromozóm | Velikost celého chromozomu (páry nukleotidů) |
Pozice genu na chromozomu |
sémantický řetězec |
introny |
---|---|---|---|---|---|---|
ARO3 | DAHF syntáza | IV | 1 531 933 | 521816..522928 | − | |
ARO4 | DAHF syntáza | II | 813 184 | 716882..717994 | doplněk | − |
ARO1 | Pentafunkční protein aroma | IV | 1 531 933 | 704484..709250 | − | |
ARO2 | Chorismát syntáza | VII | 1 090 940 | 226399..227529 | − | |
ARO7 | Chorismat-mutaza | XVI | 948 066 | 674861..675631 | doplněk | − |
Umístění genů šikimátové dráhy v chromozomech Populus trichocarpa (haploidní počet chromozomů - 19): [84]
Gen | Produkt (funkce) | Chromozóm | Velikost celého chromozomu (páry nukleotidů) |
Pozice genu na chromozomu |
sémantický řetězec |
introny |
---|---|---|---|---|---|---|
DHS3 | DAHF syntáza | LGII | 24 482 572 | 7115794..7120328 | + | |
DHS1 | DAHF syntáza | LGV | 17 991 592 | 1074502..1077390 | doplněk | + |
DHS4 | DAHF syntáza | LGV | 17 991 592 | 9061181..9065741 | doplněk | + |
DHQS6 : DHQS7 | 3-dehydrochinát syntáza | … NW_001492764.1 | doplněk | + (Oba možné přepisy) | ||
DHQD1 | dehydrochinát-dehydratáza/shikimát(chinát)-dehydrogenáza | …NW_001492761.1 | + | |||
DHQD2 | dehydrochinát-dehydratáza/shikimát(chinát)-dehydrogenáza | LGXIII | 13 101 108 | 1974817..1978681 | doplněk | + |
DHQD3 | dehydrochinát-dehydratáza/shikimát(chinát)-dehydrogenáza | LGXIII | 13 101 108 | 1981754..1986754 | doplněk | + |
DHQD4 | dehydrochinát-dehydratáza/shikimát(chinát)-dehydrogenáza | LGX | 21 101 489 | 4580304..4584686 | + | |
DHQD5 | dehydrochinát-dehydratáza/shikimát(chinát)-dehydrogenáza | LGXIV | 14 699 529 | 6220933..6226210 | + | |
SK1 | šikimát kináza | …NW_001492757.1 | doplněk | + | ||
SK2 | šikimát kináza | LGV | 17 991 592 | 1995576..1998169 | doplněk | + |
SK3 | šikimát kináza | LGVII | 12 805 987 | 5135260..5138431 | doplněk | + |
SKp | šikimát kináza | LGII | 24 482 572 | 4138794..4141592 | doplněk | + |
EPSPS | EPSF syntáza | LGII | 24 482 572 | 10940242..10944837 | + | |
CS1 | chorismát syntáza | LGVIII | 16 228 216 | 2073382..2077810 | doplněk | + |
CS2 | chorismát syntáza | LGX | 21 101 489 | 19004168..19008214 | + |
Mechanismy regulace šikimátové dráhy byly nejúplněji studovány u mikroorganismů. Prokaryota vynakládají více než 90 % svých energetických zdrojů na biosyntézu proteinů, hlavním výstupem šikimátové dráhy u většiny prokaryot jsou aromatické proteinogenní aminokyseliny [19] [85] . Proto je u většiny prokaryot rozhodující role v regulaci šikimátové dráhy přisouzena právě třem proteinogenním aminokyselinám – fenylalaninu, tyrosinu a tryptofanu. Intracelulární koncentrace proteinogenních aminokyselin jsou kriticky důležité v případě jakýchkoli jiných živých organismů. Ale například v případě rostlin nelze aromatické aminokyseliny nazývat „konečnými produkty“, protože z nich jsou intenzivně syntetizovány sekundární metabolity, které mohou tvořit významnou část sušiny [85] . Předpokládá se, že šikimátová dráha v rostlinách je regulována komplexnějším způsobem a převážně na transkripční úrovni [86] .
Regulace šikimátové dráhy se provádí řízením syntézy klíčových enzymů a regulací aktivity těchto enzymů. Stejně jako v případě většiny ostatních metabolických drah je šikimátová dráha nejvíce charakterizována regulací úplně první specifické reakce (u většiny organismů je to reakce syntázy DAHF). Represe syntézy DAHF syntázy na transkripční úrovni může být způsobena fenylalaninem, tyrosinem a tryptofanem.
U většiny mikroorganismů ( Escherichia coli , Erwinia , Methylobacillus capsulatus ) je DAHF syntáza reprezentována třemi izozymy, z nichž každý podléhá retroinhibici jedné ze tří aminokyselin - fenylalaninu (DAHF syntáza-[Phe]), tyrosinu (DAHF syntáza -[Tyr]) a tryptofan (DAHF-syntáza-[Trp]). Dominantním enzymem je DAHF-syntáza-[Phe], poskytující 80 % aktivity. V Pseudomonas je DAHF syntáza reprezentována dvěma izozymy (DAHF syntáza-[Tyr], DAHF syntáza-[Trp]) a dominantní je DAHF syntáza-[Tyr]. U mnoha mikroorganismů vykazují kromě tří aminokyselin inhibiční aktivitu také fenylpyruvát a antranilát [87] .
Fenylalanin, tyrosin a tryptofan se kromě toho, že ovlivňují počáteční fázi šikimátové dráhy, podílejí také na regulaci pozdějších fází vlastní biosyntézy a vzájemné biosyntézy. Tryptofanový operon , který kombinuje geny pro enzymy odpovědné za cestu od chorismátu k tryptofanu (tryptofanová dráha), je regulován tryptofanem prostřednictvím represe a jevu zvaný atenuace [88] . Aktivita enzymů kódovaných tryptofanovým operonem podléhá zpětnovazební regulaci tryptofanem .
Kromě tryptofanového operonu se útlum projevuje i u tzv. fenylalaninového operonu (u Escherichia coli je dvoucitronový: phe L - phe A; produkty - PheL - nefunkční vedoucí peptid, PheA - chorismátmutáza/prefenát dehydratáza).
Bylo také prokázáno, že u některých organismů mohou mít produkty šikimátové dráhy, které jsou sekundárními metabolity (například sloučeniny fenazinu v bakteriích, které je produkují), významný regulační účinek na enzymy šikimátové dráhy.
Systémy regulačních mechanismů na příkladech konkrétních organismů (uvedeny pouze hlavní regulační vztahy): [89]
Escherichia coliReprese . Fenylalanin potlačuje syntézu DAHF syntázy-[Phe] achorismátmutázyv expresipheLpheA, vedoucího peptidu PheL: MKHIPFFFAFFFTFPstop). Tyrosin potlačuje syntézu DAHF syntázy-[Tyr] a chorismátmutázy/prefenátdehydrogenázy (geny pro tyto enzymy jsou ve stejném operonu). Tryptofan potlačuje syntézu DAHF syntázy-[Trp] a enzymů tryptofanového operonu.
Gen aro L šikimát kinázy v Escherichia coli podléhá transkripční kontrole tyrosinem [90] .
Inhibice . Fenylalanin allostericky inhibuje aktivitu DAHF syntázy [Phe] a chorismátmutázy/prefenát dehydratázy. Tyrosin allostericky inhibuje aktivitu DAHF syntázy-[Tyr] a chorismátmutázy/prefenátdehydrogenázy. Tryptofan allostericky inhibuje aktivitu DAHF syntázy [Trp] a antranilát syntázy/anthranilát fosforibosyltransferázy.
Šikimátdehydrogenáza Escherichia coli je alostericky regulována šikimátem [90] .
Bacillus subtilisReprese . Fenylalanin a tyrosin potlačují syntézu DAHF syntázy/chorismat mutázy. Fenylalanin potlačuje syntézu prefenátdehydrogenázy, tyrosin-prefenátdehydrogenázy, tryptofanu - enzymů tryptofanového operonu.
Indukce . Chorismát indukuje syntézu enzymů tryptofanového operonu.
Inhibice . Chorismát a prefenát alostericky inhibují aktivitu DAHF syntázy DAHF syntázy/chorismatmutázy. Fenylalanin allostericky inhibuje prefenátdehydrogenázu, tyrosin inhibuje prefenátdehydrogenázu a tryptofan inhibuje antranilátsyntázu.
Euglena gracilisU Euglena gracilis se reakce šikimátové dráhy vyskytují v chloroplastech při osvětlení a v cytosolu při nepřítomnosti světla. Tato vlastnost je spojena se zřejmou racionalitou takového přizpůsobení metabolismu příslušným světelným podmínkám ( při fotosyntéze snadno vznikají výchozí a makroergické sloučeniny, redukční ekvivalenty). Za cytosolické a v chloroplastech lokalizované varianty šikimátové dráhy jsou zodpovědné různé geny a v souladu s tím různé izozymy [91] .
Produkty šikimátové dráhy jsou proteinogenní aminokyseliny a prekurzory esenciálních kofaktorů ; cesta šikimátu je poměrně konzervativní, nachází se u evolučně nejvzdálenějších organismů – zástupců tří domén (bakterie, archaea, eukaryota) a zjevně nemá žádnou alternativu. Tato fakta naznačují, že tento systém chemických přeměn v blízké moderní podobě vznikl na úsvitu evoluce před více než 3 miliardami let a pravděpodobně vznikl ještě před vytvořením genetického kódu . Skutečnost, že pro většinu archaea jiná počáteční stádia šikimátové dráhy, která mají pouze některé rysy podobnosti s počátečními stádii šikimátové dráhy bakterií a eukaryot, se stává v souladu s mnoha dalšími významnými rozlišovacími rysy a je v souladu s myšlenkou velmi raná evoluční izolace této skupiny živých organismů [92] .
Geny a proteinové produkty těchto genů jsou vyvíjející se formace. Studium rozdílů ve strukturách genů a enzymů šikimátové dráhy, stejně jako rozdílů v jejích regulačních mechanismech, poskytuje cenné informace pro konstrukci kladogramů . Například isozymové složení DAHF syntázy se používá jako fylogenetický marker. Zvláštní pozornost si zaslouží multifunkční proteiny, produkty fúzovaných genů. Slučování genů je relativně vzácná evoluční událost a sloučené geny jsou poměrně stabilní a nejsou náchylné k opakované reverzní segregaci, proto jsou sloučené geny markery, které umožňují objasnit fylogenetické vztahy taxonů na různých hierarchických úrovních. Pro výzkumníky původu a evolučních vztahů eukaryot je zvláště atraktivní supergen arom [91] .
Enzymy, které provádějí různé reakce šikimátové dráhy, i přes některé analogie v povaze vyšších struktur, nevykazují žádné známky homologie a jejich fylogeneze jsou zcela odlišné. To znamená, že tyto enzymy vznikly odděleně a vyvíjely se velmi dlouhou dobu před divergenci domén Bacteria a Archaea . To platí pro DAHF syntázu, dehydrochinátsyntázu, dehydrochinázu, EPSP syntázu, chorismátsyntázu [92] .
Kanonický shunt (syntéza dehydroquinátu přes DAHF) je v přírodě rozšířenější a je evolučně starší než alternativní verze shuntu (syntéza dehydrochinátu přes ADTH). Ten je charakteristický pro většinu archaea a vznikl spolu s divergenci bakteriálních a archaických domén přitahováním starověkých primitivních enzymů s různými katalytickými funkcemi. Využití dráhy DAHF některými fylogeneticky různorodými archaea, stejně jako objev typické archaální dráhy ADTH u některých bakterií, se vysvětluje obousměrným horizontálním přenosem genů, který byl běžný zejména v raných fázích prokaryotické evoluce. Existují určité spekulace, proč mohla vzniknout alternativní biosyntetická cesta pro dehydroquinát. To by mohlo být způsobeno nízkou dostupností prekurzoru, d -erythrose-4-fosfátu (přítomnost alternativní cesty přes ADTH v různých mikroorganismech koreluje s nepřítomností transketolázy) a/nebo faktorem úspory energie by mohl být důležitý, protože fosfoenolpyruvát je makroerg [92] .
Pokud je nedostatek fosfoenolpyruvátu kritický, pak by DAHF syntáza mohla být potenciálně nahrazena 2-keto-3-deoxy-6-fosfogalaktonát aldolázou (KDPGal-aldolázou). Tento enzym, katalyzující reverzibilní aldolové štěpení 2-keto-3-deoxy-6-fosfogalaktonátu na pyruvát a d -glyceraldehyd-3-fosfát, je také schopen katalyzovat podobnou hlavní vedlejší reakci, aldolovou kondenzaci pyruvátu a d- erythrose-4-fosfát s tvorbou DAHF. I když je takto navrhovaná možnost nahrazení DAHF syntázy KDPGal aldolázou zkoumána v experimentech na řízené evoluci (z důvodu vyhlídky na získání efektivnějších producentů), [93] [94] KDPGal aldolázy nalezené v přírodě jsou v tomto příliš neaktivní. respekt a nemůže funkčně zcela nahradit DAHF.-syntáza [92] .
Nejpřesvědčivějším vysvětlením nepřítomnosti určitých enzymů u určitých archeí je existence nehomologních izofunkčních enzymů. Ve většině archaea tedy místo obvyklé šikimátkinázy existuje nehomologní šikimátkináza, která patří do nadrodiny GHMP kináz (zahrnuje galakto-, homoserin-, mevalonát- a fosfomevalonátkinázy) a je výsledkem duplikace některých genu s následnou změnou jeho funkcí. Některé archaea mají stále obvyklou šikimátkinázu, nicméně fragmentace její taxonomické distribuce v doméně, heterogenita (nalezena je jak jednodoménová forma šikimátkinázy, tak bifunkční šikimátkináza/šikimátdehydrogenáza), naznačuje různé fylogenetické kořeny v rámci domény a o opakovaném horizontálním získávání šikimátkinázy z bakterií [92] .
Zdá se docela pravděpodobné, že eukaryota zdědila šikimátovou dráhu (včetně pentafunkčního proteinu arom, který je běžný pouze u eukaryot) od posledního společného eukaryotického předka, část eukaryot ( Metazoa ) byla šikimátová dráha nenávratně ztracena v důsledku heterotrofie , a druhá část ( Plantae ) byla ztracena a znovu získána symbiózou se sinicemi , o nichž se předpokládá , že dali vzniknout plastidům . Kódování enzymů shikimátové dráhy rostlinným jaderným genomem se vysvětluje endosymbiotickým přenosem genů. Zdá se, že evoluční historie šikimátové dráhy u hub, stejně jako u rostlin, byla ovlivněna událostmi horizontálního přenosu prokaryotických genů [91] .
Je také možné, že supergen arom nemusel existovat v době posledního společného eukaryotického předka. V tomto případě supergen arom , zjevně velmi raná eukaryotická inovace, musel být propagován horizontálním přenosem genů v nejranějších fázích eukaryotické evoluce [91] .
Enzymové homology šikimátové dráhy se účastní dalších metabolických procesů (metabolismus sacharidů a syntéza sekundárních metabolitů ). Aminoshikimátová dráha - tato dráha, která je důležitá pro syntézu některých sekundárních metabolitů některými aktinomycetami ( rifamyciny , naftomyciny , streptovaricin , geldanamycin , ansamitociny , ansatrieniny , mitomyciny a další), se vyvinula z cest homologních enzymů divkiidumátů indivkiidumátů enzymy šikimátové dráhy a provádějí podobné reakce).
V procesu studia šikimátové dráhy, jakož i mechanismů toxických účinků různých chemických faktorů na živé organismy, bylo objeveno a zkonstruováno velké množství různých inhibitorů šikimátové dráhy. Mnoho z těchto inhibitorů našlo uplatnění nejen při řešení důležitých výzkumných problémů, ale také v praktických aplikacích (dobrý příklad je herbicid glyfosát ). Jak struktura těchto syntetických a polosyntetických sloučenin, tak povaha jejich vlivu na enzymatický systém šikimátové dráhy jsou velmi různorodé. V jednodušších případech je inhibitor podobný (analogický) substrátu nebo přechodnému stavu a přímo inhibuje enzym kompetitivní vazbou na jeho aktivní místo. V jiných případech se do dráhy zapojí sloučenina a teprve po určitém počtu kroků produkt biotransformace sloučeniny způsobí zablokování procesu (například přítomností atomu fluoru v místě, kde atom vodíku je v této fázi u normálního substrátu zásadně důležitý) – tzv. „smrtící syntéza“. Mnoho inhibitorů je aktivních pouze pro určitý rozsah organismů; v případě různých organismů se povaha inhibičního účinku může výrazně lišit. Například u Neurospora crassa je přidaná kyselina ( 6S)-6-fluorshykimová metabolizována na (6S ) -6 -fluor-5-enolpyruvyl-shikimát-3-fosfát, který kompetitivně inhibuje chorismátsyntázu, [95] [96] , zatímco u Escherichia coli jde metabolismus vnesené kyseliny ( 6S)-6-fluoroshikimové dále a vzniká 6-fluorochoismát, který nemůže být substrátem při syntéze para - aminobenzoátu [97] . [96]
Studium šikimátové dráhy, jejích regulačních mechanismů, stejně jako produkce, studium a selekce různých mutantů s tím spojených, umožnilo identifikovat „kontrolní páky“ a vytvořit vysoce kvalitní kmeny produkující aromatické aminokyseliny a další cenné sloučeniny. [90] . V současnosti je mikrobiologická výroba těchto sloučenin ekonomičtější než jejich chemická syntéza.
Dráha šikimátu u Metazoa chybí , ale některé zvířecí patogeny se bez ní neobejdou. Šikimátová dráha je proto potenciálním cílem v boji proti těmto patogenům. Bylo prokázáno, že analogy fluoroshikimátu (kyselina (6S)-6-fluoroshikimová atd.) in vitro inhibují růst Plasmodium falciparum [98] . [91] Vyvíjejí se antibakteriální léky, které se zaměřují na enzymy šikimátové dráhy [99] . Navíc na základě patogenů oslabených blokádou šikimátové dráhy je možné připravit vakcíny [100] .
Kompetitivní inhibitor rostlinné EPSP syntázy, N- (fosfonomethyl)-glycin ( glyfosát ), je široce používán jako neselektivní systémový herbicid . Je známo, že EPSP syntázy řady organismů (kmeny Agrobacterium tumefaciens , Salmonella typhimurium , Klebsiella pneumoniae atd.) nejsou prakticky inhibovány glyfosátem. To se stalo předpokladem pro vytvoření speciálních geneticky modifikovaných plodin, které jsou dostatečně odolné vůči působení herbicidů na bázi glyfosátu. Účinnost regulace plevelů v kulturách těchto plodin se výrazně zlepšuje (obvykle to znamená zvýšení výnosu, nikoli však snížení spotřeby glyfosátu). Bylo zjištěno, že glyfosát může snížit aktivitu dalších dvou enzymů šikimátové dráhy: DAHF syntázy a dehydrochinátsyntázy, a také může mít určitý vliv na aktivitu několika dalších enzymů jiných metabolických procesů. [101]
Kodony kódující aminokyseliny patřící do šikimátové rodiny (syntetizované šikimátovou cestou) začínají U ( mesenger RNA , 5'→3'). Fenylalaninové kodony - UUU , UUC , tyrosinové kodony - UAU , UAC , tryptofanový kodon - UGG (v mitochondriích - také UGA , což je stop kodon ve standardní verzi genetického kódu ). Aminokyseliny generované stejnou metabolickou cestou jsou zpravidla kódovány kodony se stejným nukleotidem na 5' konci. Pravděpodobnost, že taková organizace genetického kódu bude náhodná, je poměrně nízká, takže pokusy najít vysvětlení jsou docela rozumné. Tato skutečnost nachází své vysvětlení v rámci představ o koevoluci genetického kódu a drahách biosyntézy aminokyselin, které se staly proteinogenními aminokyselinami.
Americká hudební skupina z Bellinghamu , „Portals Align“, hrající v žánru groove metal , instrumentální hudba , progresivní rock , experimentální hudba , djent , nahrála v listopadu 2011 hudební skladbu s názvem „Shikimate Pathway“, odpovídající videoklip byl zveřejněn na YouTube [ 102] . Neméně kuriózní je dubstepová skladba „Shikimat“ z „Toneless Bombast“. Na statickém intru v klipu jsou rozeznatelné ručně nakreslené vzorce a nápisy související s cestou šikimátu [103] .
Nejznámější benzoidové aromatické produkty jiných cest jsou:
Reakce šikimátové dráhy | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
|
Biosyntéza aromatických aminokyselin | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Roky objevování některých nejdůležitějších sloučenin, které jsou výchozími sloučeninami šikimátové dráhy a také produkty šikimátové dráhy | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
|
|
|
Tématu šikimátové cesty se věnuje řada přehledových publikací:
monografie:
Zpráva ze sympozia konaného 12. – 16. června 1985 v Asilomar Conference Center, Pacific Grove, Kalifornie, USA (šéfredaktor Eric E. Conn):